Evaluate|GC content|Phred|BAC|heterozygous single nucleotide polymorphisms|estimate genome size|
作者：互联网
（Evaluate）：检查reads，可使用比对软件：使用SOAPaligner重新排列；采用massively parallel next-generation sequencing technology，效果很好（因为覆盖率高，精度高）
重新做有何意义：此时不需要过高的测序深度，因为用原来的read向之前assembly的基因组上比对，此时的测序深度也可以自己设定，20X以上就很好。
massively parallel next-generation sequencing technology是什么？
（GC content）检查每500bp（因为DNA片段的长度大概是500bp）滑窗的GC含量（因为CG含量应该是均一的，在这里是要检查是否均一，如果不均一可以发现错配或者该基因的结构特征），我们也发现了CG含量过高和过低值(因为只有少部分（因为它比人和狗的基因组具有相似性，但异常CG含量都少）片段有这种异常)，熊猫与人和狗记忆中的差异性在于：熊猫assembly中缺失了一部分CG含量高的基因。所以可以知道，本次assembly并不被GC含量异常所严重影响。
500-bp non-overlapping sliding windows：用来分区域检查组装成果，这里500bp为一个单位，检查该单位中的碱基含量等，碱基分布是否均匀（一般正常是GC含量占40%，因为碱基互补配对原则），基因组中存在多少比例的高GC区域等。据此，可在一定程度上推测物种基因组结构特征，组装中是否存在明显的错配，或判断测序数据中是否存在其他物种污染等
GC biased non-random sampling：因为GC的氢键有三条，所以该样本在打碎时，GC氢键不易打断，所以这是可选择的采样。
sufficient for de novo assembly：虽然存在错误，但是可以容忍
（compare with GeneBank）：除Y染色体性别决定区的基因外，其余26个基因的比对成功率很高。特别是RPS15（核糖体）基因，这说明assembly的coverage and completeness很好，（全面性补充：因为核糖体基因自身性质，所以存在多拷贝和拥有重复序列的片段）
SRY sex：sex-determining region of Y-chromosome，Y染色体性别决定区
为什么核糖体存在多拷贝和拥有重复序列的片段？因为核糖体要快速组装，所以多拷贝和重复序列是最快的。
（assess the large-scale and local assembly accuracy of the scaffolds）：针对scaffold，组装人工细菌染色体，利用人工细菌染色体拷贝了一个scaffold（ large-scale），查看单碱基错配和插入缺失情况（local assembly accuracy），这些情况是由于未知的SNP情况（因为在BAC上的depth高（可靠）并且差异处phred高（Phred）的因为这是排除了已注释的SNP和嵌合体的条件下做的，所以只能是未知的SNP。
Phred计算许多与波峰大小和分辨率相关的参数，根据这些参数，从一个巨大的查询表中找出碱基质量得分，这里质量得分高，则证明可靠性。
杂合SNP：heterozygous single nucleotide polymorphisms：单碱基突变（SNP），发生在成对两条染色体上，所以是杂合现象，即染色体1和染色体2是成对染色体，染色体1 上某处碱基是A与它互补的链上碱基是T，但是染色体2上相对应的染色体相应处本来应该是A，但是由于SNP所以变成了G，则与之对应的链上碱基为C，则该处序列，四种碱基都存在。
嵌合体：杂合体是嵌合程度最大的嵌合体，就是每个亲代动物的遗传基因各占一半，不是杂合动物，则基因占比不定。
(BACs) independently using Sanger sequencing technology：是因为比较准，用sanger测长序列比较准，但是贵。
（genome coverage of the assembled contigs and scaffolds）使用17base寡核苷酸，依据其出现频率看深度，得到深度后，综合（sequencing depth+size ratio of syntenic blocks+C-values）因为存在的序列错误（repeat）所以我们应该得到比现有大小更小的基因组大小
sequencing depth：
Reference：http://blog.sciencenet.cn/blog-3406804-1162384.html
“如下所示，使用某物种的二代测序数据计算k-mer（选取k-mer长度17），最后可得到一个k-mer频数分布表（下图左图），第一列为k-mer深度，即各k-mer的出现频数；第二列为出现该频数的k-mer片段总数。下图右图为k-mer频数分布图，使用左图的统计表数据所绘制，图中横坐标为各k-mer的出现频数（Frequency），纵坐标为出现该频数的k-mer片段总数（Number）。
可以发现原始图中，最左侧（Frequency = 1、2等起始位置处）出现了很高的值，表明测序结果中存在大量的k-mer仅出现了1-2次，这个在k-mer频数统计表中也可轻易发现。这是因为在实际的二代测序数据中，由于测序错误（如Illumina测序平台的平均错误率约1%）的存在会引入许多带有错误碱基的reads，将这些reads打断成长度K的k-mer后，会产生许多错误的k-mer。由于测序错误带来的碱基类型是随机的，因此可知这些错误k-mer的出现频数很低，但总数目却非常的多。因此在上图中，低频数的k-mer数目占很大的比例，即在Frequency = 1、2等起始位置处出现很高的k-mer数目，使得图中曲线峰值很难分辨；为了增强曲线的可读性，可选择在作图时屏蔽掉曲线最左侧区域。当然也不排除一些真实的核酸序列，由于其碱基组成具有特异性且其只被测序测到了一次，将该序列截断为一定长度的k-mer之后这些k-mer只出现了唯一一次。但是相较于测序错误所产生的k-mer数量，后面这种情况所产生的k-mer数量基本上可忽略了，除非在很低深度的测序模式下。
此外，我们也可轻易看到，出现次数为几百上千次的k-mer数量其实很少。尽管在统计时不可丢弃这些出现频数很高但总体数量很少k-mer，但只是作图展示k-mer频数分布的话，是无需展示这些高频数深度的k-mer的，以便增强曲线的可读性（一些k-mer分析软件会统计至很高的k-mer频数深度，如10000，事实上在绘制k-mer曲线图时用不到这么多，视情况加以取舍）。
通常情况下，会考虑将低频数和高频数的数据屏蔽掉，屏蔽频数区间根据实际情况而定。屏蔽Frequency = 1、2等起始位置处以及Frequency > 500或1000等高频深度的数据后，峰值即可呈现出，结果示例如下图所示（使用数据同上，只展示5 ≤ Frequency ≤ 500的区域）。此时，在不考虑测序错误率、基因组的杂合度和重复度的情况下，逐碱基取k-mer，则k-mer曲线在理想状态下服从泊松分布。
上述我们获得了k-mer频数统计结果，接下来可以根据这个统计结果初步估算测序物种基因组特征。其中，k-mer分析估算基因组大小的原理如下。
从reads中逐碱基取出的所有k-mer能够遍历整个基因组。根据Lander waterman算法，基因组大小（G）满足如下公式：
其中，L为reads平均长度，K为k-mer长度；knum为所有的k-mer总个数，kdepth为k-mer频数的期望深度（即k-mer曲线中主峰对应的横坐标位置）；bnum为测序reads覆盖碱基的总个数，bdepth为覆盖碱基的期望深度。”
在这里，我们即可根据测序数据中的k-mer频数分布统计结果，大致估算出物种基因组大小了。
修正：覆盖度&深度：覆盖深度常常决定了特定碱基位置的变异发现是否具有某种水平的可信度
size ratio of syntenic blocks：共线区域尺寸比在这里对于估算基因组大小有何作用？
k-mer：有这么个reads（当然实际比这个长）：AACTGACTGA.如果k-mer的k为3的话，我们可以将其切割为AAC ACT CTG TGA GAC ACT CTG TGA
（refine our estimate of the panda genome size）狗和熊猫的保守区98%，且熊与熊猫的染色体组型相似（但熊基因组大小不可知，狗基因组大小可知同时狗和熊C-value可知，比较狗和熊C-value，可知道熊基因组大小小于狗。），推断其基因组大小相似，所以我们确认基因组大小是2.4Gb。因此，使用该基因组大小得到contig和scaffold 的coverage高。
C-value：（图像中单倍体基因总含量）值，与基因组总含量有成正比吗？C值矛盾
标签：Phred,频数,Evaluate,碱基,测序,基因组,content,GC,mer 来源： https://www.cnblogs.com/yuanjingnan/p/11064024.html